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菌物学报  2015 , 34 (5): 871-879 https://doi.org/10.13346/j.mycosystema.140112

Orginal Article

细胞自噬及真菌中自噬研究概述

闫思源, 姜学军*

中国科学院微生物研究所真菌学国家重点实验室 北京 100101

Overview of autophagy and related research in fungi

YAN Si-Yuan, JIANG Xue-Jun*

State Key Laboratory of Mycology, Institute of Microbiology, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100101, China

通讯作者:  *Corresponding author. E-mail: jiangxj@im.ac.cn*Corresponding author. E-mail: jiangxj@im.ac.cn

收稿日期: 2014-04-15

接受日期:  2014-12-2

网络出版日期:  2015-09-15

版权声明:  2015 中国科学院微生物研究所《菌物学报》编辑部 版权所有 

基金资助:  国家自然科学基金(31171329,31371403)

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摘要

细胞自噬是真核生物中广泛存在的、主要依赖于溶酶体或液泡的保守的降解途径,通过降解细胞内过多或异常的蛋白、细胞器等以维持正常的细胞功能。近10年来自噬研究方面的飞速进展显示出自噬与癌症、神经退行性疾病、衰老及心脏病等人类疾病相关。与此同时,自噬在丝状真菌的生长、形态和发育等方面发挥着重要作用,特别是在丝状真菌的细胞分化过程中,自噬起到了关键性作用,如致病性生长、程序性细胞死亡及孢子形成。本文主要论述了什么是自噬,自噬的检测方法及以真菌为对象的自噬研究进展。

关键词: 细胞自噬 ; 自噬相应蛋白(Atg) ; 酵母 ; 丝状真菌

Abstract

Autophagy is a universal lysosomal degradation pathway in eukaryotic cells, and it plays an important role in maintaining normal cell functions by degrading excess or abnormal intracellular proteins, organelles, etc. During the past decade, the rapid progress of research in the field revealed that autophagy principally serves an adaptive role in diverse pathologies, including cancer, neurodegeneration, aging, and heart diseases. Moreover, autophagy also plays an essential role in filamentous fungi during growth, morphology, and development. Importantly, autophagy functions as a key factor during differentiation, such as pathogenic development, programmed cell death, and spore formation. This review focuses on nomenclature and detection of autophagy, and gives a glimpse on related studies about autophagy in fungi.

Keywords: cell autophagy ; Atg proteins ; yeast ; filamentous fungi

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闫思源, 姜学军. 细胞自噬及真菌中自噬研究概述[J]. , 2015, 34(5): 871-879 https://doi.org/10.13346/j.mycosystema.140112

YAN Si-Yuan, JIANG Xue-Jun. Overview of autophagy and related research in fungi[J]. 菌物学报, 2015, 34(5): 871-879 https://doi.org/10.13346/j.mycosystema.140112

1 自噬的涵义

自噬是一种广泛存在于真核细胞内的依赖于溶酶体/液泡的降解途径,通过降解细胞内过多或异常的蛋白、细胞器等以维持正常的细胞功能。在自噬过程中,待降解的胞浆大分子物质或细胞器被双层膜泡结构包裹并通过细胞骨架微管网路系统运送至降解细胞器(溶酶体或液泡)中降解(Wang & Klionsky 2003),降解得到的产物分子如氨基酸等被运回细胞质内,重新利用。此外,自噬在某些情况下还能导致细胞死亡,因而被认为是区别于细胞凋亡的另一种细胞程序性死亡形式(Ⅱ型程序性死亡)(Edinger & Thompson 2004),细胞死亡命名委员会(Nomenclature Committee on Cell Death)分别在2009年和2011年讨论并推荐使用“自噬性细胞死亡”(autophagic cell death)这一概念来描述伴随着大量细胞质空泡化,往往(尽管不总是)表示自噬流(autophagic flux)增加的细胞死亡(Kroemer et al. 2009;Galluzzi et al. 2012)。“自噬性细胞死亡”这一概念暗示着自噬实际上可以执行细胞消亡,支持这一论证的证据之一是自噬似乎响应于体外选择的化疗药物而介导一些癌细胞的死亡(特别是当缺少重要的细胞凋亡调节因子如BAX和BAK或caspases时)(Grander et al. 2009)。同时,自噬作为细胞的管理程序,具有消除有缺陷的蛋白和细胞器,阻止异常蛋白的聚合积累和清除细胞内的病原体的功能,可能是防止衰老、癌症、神经退行性疾病和病原体感染的关键(Levine & Kroemer 2008)。已知自噬过程在几乎所有类型细胞的生理学和病理生理学方面都发挥着重要作用,自噬被认为是响应多种刺激的细胞反应(Codogno & Meijer 2005)。

2 自噬的分类

根据包裹底物分子及运送至降解细胞器方式的不同,可以将自噬分为巨自噬(macroautophagy),微自噬(microautophagy)和分子伴侣介导的自噬(chaperone-mediated autophagy)等3种(图1),其中巨自噬即通常所指的自噬,在本文此后的部分中,没有特殊标注的“自噬”均代表巨自噬(Mizushima et al. 2008)。

图1   巨自噬、微自噬和分子伴侣介导的自噬示意图

Fig. 1   Schematic description of macroautophagy, microautophagy and chaperone-mediated autophagy.

巨自噬:巨自噬是唯一产生自噬体结构的自噬过程,自噬体的直径一般为300-900nm,平均500nm,其双层膜泡囊中常含有胞浆成分和某些细胞器。在巨自噬过程中,待降解的底物被自噬体包裹并运送到降解细胞器,接着与降解细胞器的膜融合,释放底物,底物随后被降解。

微自噬:在微自噬过程中,降解细胞器直接包裹底物如长寿命蛋白,并在其内部降解为小分子。

分子伴侣介导的自噬:可溶性蛋白在分子伴侣的协助下进入降解细胞器,并被降解的过程。与前两者相比,分子伴侣介导的自噬降解途径在清除蛋白时具有选择性,即只能介导可溶性蛋白的降解。

3 自噬的发生过程

以巨自噬为例,自噬的发生过程可人为的划分为4个部分:(1)分隔膜的形成:机体在正常或应激条件下,粗面内质网非核糖体区域、高尔基体等来源的杯状双层膜结构围绕待降解底物;(2)自噬体的形成:随着双层膜结构的延伸和末端融合,待降解底物完全与细胞质隔离,形成自噬体;(3)自噬体的运输和融合:自噬体通过细胞骨架微管网路系统被运输到降解细胞器,紧接着自噬体外层膜与降解细胞器的膜融合,内层膜与底物分子一起进入降解细胞器内部,随后自噬体的内层膜断裂,暴露出底物分子;(4)降解、再循环:底物分子最终被多种水解酶水解成小分子,降解产物被释放回细胞质,循环利用(Xie & Klionsky 2007)(图2)。在动物细胞中,与自噬体融合后的溶酶体最后通过再生机制从融合细胞器中再生(Yu et al. 2010)。

图2   自噬的发生过程简图

Fig. 2   Schematic depiction of autophagy process.

4 自噬相关蛋白

细胞自噬现象最初是由Christian de Duve等(Klionsky 2008)在20世纪60年代初发现的,当时并没有受到科学界的广泛关注,自噬研究的进展十分缓慢。对自噬现象较为透彻的研究首先在酿酒酵母Saccharomyces cerevisiae中进行,通过遗传学方法,到目前为止在酵母中已经发现了40多个与自噬相关的蛋白(表1),其中大部分在真核生物域内都十分保守,这说明自噬是一个进化保守的过程,其分子机制从酵母到哺乳动物十分相似。2003年,Klionsky et al.(2003)将编码这些蛋白的基因统一命名为Atg(AuTophaGy),用来代表自噬基因及其相对应的蛋白质。

表1   酵母中的Atg蛋白

Table 1   List of yeast Atg proteins

名称
Name
功能
Function
Atg1丝/苏氨酸蛋白激酶,与Atg13和Atg17形成复合物,参与自噬的起始过程.Protein serine/threonine kinase, forms a complex with Atg13 and Atg17, and participates in autophagy initiation.
Atg2外周膜蛋白,参与自噬囊泡的形成,Atg9在自噬泡组装位点(PAS)及线粒体间的穿梭循环.Peripheral membrane protein required for autophagic vesicle formation, involved in cycling of Atg9 from the PAS to the mitochondria.
Atg3E2交联酶,参与Atg8与磷脂酰乙醇胺(PE)交联形成Atg8-PE的过程.E2-like enzyme, plays a role in formation of Atg8-phosphatidylethanolamine conjugates.
Atg4半胱氨酸蛋白酶,通过剪切碳末端的半胱氨酸残基或去除PE调节Atg8蛋白的脂化修饰.Cysteine protease, cleaves the carboxy terminal arginine residue of Atg8, or PE from Atg8-PE conjugate.
Atg5多以Atg12-Atg5偶联的形式存在于细胞中,Atg5- Atg12-Atg16复合物的组成部分,参与自噬体的形成.Mostly exists as Atg12-Atg5 conjugates, part of the Atg12-Atg5- Atg16 complex, essential for autophagosome formation.
Atg6III类PI3K复合物I和II的组成部分,复合物I参与自噬过程,复合物II参与液泡蛋白分选(VPS)过程.Subunit of PI3K complexes I and II; Complex I is essential in autophagy and Complex II is required for vacuolar protein sorting.
Atg7E1活化酶,介导Atg12与Atg5,以及Atg8与PE的偶联.E1-like activating enzyme, mediates the conjugation of Atg12 with Atg5 and Atg8 with PE.
Atg8泛素样蛋白,与PE偶联,调控自噬体形成过程中自噬泡的延伸.Ubiquitin-like protein, conjugates with PE, involving in phagophore expansion during autophagosome formation.
Atg9跨膜蛋白,在PAS及其他细胞内结构间穿梭循环.Transmembrane protein cycles between the PAS and other cytosolic punctate structures.
Atg10E2交联酶,介导Atg12-Atg5复合物的形成.E2-like conjugating enzyme; mediates formation of the Atg12-Atg5 conjugate.
Atg11接头蛋白,参与过氧化物酶体自噬及Cvt通路.Adapter protein for pexophagy and the Cvt targeting pathway.
Atg12泛素样蛋白,与Atg5偶联形成Atg12-Atg5,Atg5-Atg12- Atg16复合物的组成部分.Ubiquitin-like protein, conjugated to Atg5 to form a complex, part of the Atg5-Atg12-Atg16 complex.
Atg13Atg1复合物的调控亚基,其磷酸化水平负向调节Atg1的激酶活性.Regulatory subunit of the Atg1p signaling complex, its phosphorylation levels negatively regulates Atg1 kinase activity.
Atg14III类PI3K复合物I 的组成部分,负责将复合物I定位到PAS.Subunit of class III PI3K complex I, targets complex I to the PAS.
Atg15一种跨膜脂酶,参与自噬囊泡的降解,释放其内容物.Transmembrane lipase, required for the degradation of the autophagic vesicle.
Atg16参与形成Atg5-Atg12-Atg16复合物,结合至细胞膜并定位于前自噬体结构.Part of Atg5-Atg12-Atg16 complex, binds to membranes and localizes to the pre-autophagosomal structure.
Atg17支架蛋白,调节Atg1 蛋白的激酶活性,并参与PAS蛋白定位组装.Scaffold protein, stimulates Atg1 kinase activity, and acts as a scaffold for the other ATG proteins during PAS organization.
Atg18磷脂酰肌醇结合蛋白,在自噬及Cvt途径的囊泡形成过程中发挥重要作用.Phosphoinositide binding protein; required for vesicle formation in autophagy and the Cvt pathway.
待续
表1
Atg19Cvt途径中的受体蛋白,运送底物蛋白至PAS.Receptor protein for the Cvt pathway, delivers cargo proteins to the PAS.
Atg20分选连接蛋白,参与Cvt途径,能与PI3P结合.Sorting nexin family member, participates in the Cvt pathway, has a Phox homology domain that binds PI3P.
Atg21磷脂酰肌醇结合蛋白,参与Cvt途径的囊泡形成过程.Phosphoinositide binding protein, required for vesicle formation in the Cvt pathway.
Atg22液泡上的内在膜蛋白,参与液泡中氨基酸的释放.Vacuolar integral membrane protein required for efflux of amino acid.
Atg23外周膜蛋白,与Atg9及Atg27形成复合物,在PAS及非PAS区域穿梭循环.Peripheral membrane protein, forms a complex with Atg9 and Atg27, and cycles between PAS and non-PAS cytoplasmic sites.
Atg24分选连接蛋白,与PI3P结合,参与Cvt途径.Sorting nexin family member, contains a PX phosphoinositide-binding domain, play a role in Cvt pathway.
Atg25Coiled-coil蛋白,参与汉逊酵母的过氧化物酶体自噬过程.Coiled-coil protein, function during macropexophagy in Hansenula Polymorpha.
Atg26甾醇葡萄糖基转移酶,参与毕赤酵母自噬过程.Sterol glucosyltransferase, involved in the Pichia pastoris autophagy progress.
Atg27I型膜蛋白,参与自噬及Cvt途径,可能参与转运膜结构转运到PAS的过程.Type I membrane protein involved in autophagy and the Cvt pathway, may be involved in membrane delivery to the PAS.
Atg28Coiled-coil蛋白,参与毕赤酵母过氧化物酶体自噬过程.Coiled-coil protein, function during pexophagy in Pichia pastoris.
Atg29参与形成Atg17-Atg29-Atg31复合物,募集其他ATG蛋白至自噬体前体结构.Part of Atg17-Atg29-Atg31 complex, recruits other ATG proteins to the pre-autophagosomal structure.
Atg30过氧化物酶体的受体,参与过氧化物酶体自噬过程,不参与巨自噬及Cvt途径.Peroxisome receptor, required for pexophagy, but not for the Cvt or autophagy pathways.
Atg31参与形成Atg17-Atg29-Atg31复合物,参与自噬体的形成过程.Part of Atg17-Atg29-Atg31 complex, required for autophagosome formation.
Atg32线粒体外膜蛋白,募集Atg11及Atg8至线粒体表面起始线粒体自噬.Mitochondrial outer membrane protein, recruits the Atg11 and the Atg8 to the mitochondrial surface to initiate mitophagy.
Atg33线粒体自噬特异性蛋白,不参与其他自噬过程.Mitochondrial mitophagy-specific protein, not required for other types of autophagy.
Atg34Atg19的旁系同源蛋白,参与饥饿诱导的选择性自噬过程.Paralog of Atg19, receptor protein involved in selective autophagy during starvation.
Atg35参与毕赤酵母过氧化物酶体自噬过程,可以定位在细胞核中.Founction during pexophagy in Pichia pastoris, the first known nuclear protein required for the Atg pathway in yeasts.
Atg36与Atg8及Atg11相互作用,参与过氧化物酶体自噬过程.Required for pexophagy, interacts with Atg8 and Atg11.
Atg37酰基辅酶A结合蛋白,调节过氧化物酶体自噬中自噬泡的形成.Conserved acyl-CoA-binding protein, is required for pexophagy at the stage of phagophore formation.
Atg38III类PI3K复合物I中的同型二聚体亚基,维系PI3K复合物I的活性,可参与到巨自噬过程.Homodimeric subunit of PI3K complex I, required for the integrity of the active PI3K complex I and macroautophagy.
Atg39参与内质网和细胞核降解的自噬受体.Autophagy receptor with a role in degradation of the ER and nucleus.
Atg40参与内质网降解的自噬受体.Autophagy receptor with a role in ER degradation.

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5 自噬的检测方法

5.1 通过稳态的方法检测自噬体的形成

这一系列的方法具有相对安全、简便,技术及仪器普及性高等优点,一般生化实验室即可达到应用的标准,因而被广泛地用来检测自噬。这一系列的检测方法包括:(1)电子显微镜(Eskelinen et al. 2011),利用电子显微镜分析自噬过程中多种膜结构的连续变化是一种即有效又必要的定性及定量分析方法;(2)Atg8/LC3的Western Blot分析(Mizushima & Yoshimori 2007),Atg8-PE/LC3-II是唯一一种可靠的与自噬体相关联的蛋白标记,通过对其含量的Western Blot分析来间接分析自噬体的含量;(3)荧光显微镜(Kabeya et al. 2000),将绿色荧光蛋白(GFP)或其他荧光蛋白的基因与Atg8/LC3蛋白的基因融合到一起,表达一个具有功能的融合蛋白,可以被应用于间接免疫荧光和荧光显微镜的方法检测自噬。

上述方法虽然能够直接或间接检测机体中自噬体的含量,但是我们不得不面对的一个问题是:自噬体的积累一定代表着自噬过程被诱导吗?实际上,自噬体消亡过程的减慢与自噬过程的诱导一样,也能引起自噬体的积累,而在这种情况下,底物分子不能正常的降解,反映的是一个自噬被抑制的过程。前者是通过抑制自噬体成熟成为自噬泡实现的,抑制是由于自噬体未能与胞内体或溶酶体融合,或者是融合后的低效降解而引起的。上面提到的检测自噬体的方法都具有一定程度的局限性,在具体应用时应谨慎。实际上,Klionsky et al.(2012)的千人签名的文章已经指出,必须检测自噬流。

5.2 通过自噬流的方法检测自噬

自噬过程不仅仅是自噬体的形成和消亡,更重要的是底物分子在整个自噬系统中的传递,即自噬流(autophagic flux)。通过检测底物分子在细胞中的传递来分析自噬过程更为恰当。通过自噬流检测自噬的方法包括:(1)自噬性蛋白质的降解,利用放射性氨基酸标记检测细胞内长寿命蛋白的降解来检测自噬过程(Pattingre et al. 2004);(2)LC3-II的周转周期(Tanida et al. 2005),使用蛋白酶抑制剂或改变溶酶体pH的巴弗洛霉素A1阻止溶酶体的降解,或使用阻断溶酶体与自噬体融合的试剂,使得LC3-II的含量不再变化,利用免疫印迹的方法推断LC3-II的周转周期来测量;(3)p62 western印迹(Mizushima & Yoshimori 2007),P62蛋白的作用是联系LC3和泛素化底物,p62被包含到完整的自噬体中,在自噬泡阶段被降解,最近的一项研究表明p62含量的增加与自噬的抑制相关,指出这种蛋白稳定状态下的含量反映了自噬过程的状态;(4)RFP-GFP联合荧光显微镜(Kimura et al. 2007)等。

磷脂酰乙醇胺修饰的LC3(即LC3-II)含量的增加不是自噬流本质上的测量手段,但是依然可以反映自噬的诱导和抑制过程,此外,一个细胞的降解能力可能随着细胞类型、年龄、转化和/或疾病而变化,可能会决定诱导自噬的结果。最后,重要的是,尽管LC3-II的形成与自噬的诱导相关,但是我们目前不知道LC3-II的形成和自噬其余过程间的实际机制关系。因此,有必要区分自噬体或LC3-II的积累与自噬流之间的关系。

6 真菌细胞自噬

6.1 酵母与自噬

自20世纪90年代初,Daniel J. Klionsky和Yoshinori Ohsumi等细胞生物学家以酿酒酵母为模式生物展开了自噬相关基因的筛选和细胞生物学的研究,经过二十多年的努力,酵母已经成为细胞自噬分子机制研究最为透彻的模式生物。细胞自噬既可以是非选择性的,也可以是选择性的。酵母中的选择性细胞自噬主要有cvt(cytoplasm to vacuole targeting)途径、线粒体自噬(mitophy)、过氧化物酶体自噬(pexophagy)等途径。经过多年的探索与积累,研究人员发明了多种多样的针对酵母细胞自噬的检测方法,如碱性磷酸酶法(Pho8△60测定法)。PHO8是酵母液泡中碱性磷酸酶的唯一编码基因,碱性磷酸酶是一种跨膜蛋白。其N端的60个氨基酸构成跨膜信号,负责前体pho8的一系列转运。为了利用Pho8来检测细胞自噬的水平,Noda et al.(1995)将其N端的60个氨基酸去掉,得到了Pho8△60蛋白。这样处理后获得的Pho8△60蛋白无法自主进入内质网,弥散分布在细胞质中,而当发生非选择性细胞自噬时,Pho8△60蛋白会被非选择性地包裹进入自噬体,从而运送到液泡并被激活,因而可以通过检测碱性磷酸酶的酶活性来检测细胞内自噬的发生水平。

6.2 丝状真菌与自噬

丝状真菌在人类社会中十分常见,在健康、食品、农业等方面都发挥着十分重要的作用,在自然条件及工业发酵条件下,丝状真菌持续经历着营养匮乏,在这种条件下,丝状真菌可能通过自噬来促进细胞存活及分化(Bartoszewska & Kiel 2011a)。值得注意的是,到目前为止,对于丝状真菌中选择性自噬途径的研究还不是十分透彻,仅有几篇关于过氧化物酶体自噬的报道(Amor et al. 2000;Asakura et al. 2009)。细胞自噬在丝状真菌的产孢、程序性细胞死亡、致病及促进细胞生存过程中发挥重要作用。在丝状真菌米曲霉Aspergillus oryzae中,Aoatg8Aoatg13Aoatg15的功能缺失将影响其产孢过程,说明自噬在该种真菌的无性生殖中发挥作用(Kikuma & Kitamoto 2011)。无独有偶,在其他丝状真菌中,自噬相关基因同样影响着产孢过程,如烟曲霉Aspergillus fumigatus中的Afatg1Richie et al. 2007),以及稻瘟病菌Magnaporthe oryzae中的Moatg1Moatg4Moatg5Moatg8Moatg9Liu et al. 2007)等。稻瘟病的致病过程起始于分生孢子的萌发,随后产生附着胞(appressoria)侵染宿主;附着胞的产生伴随着孢子结构的解体,这一过程需要通过自噬来回收孢子内的物质供给附着胞的生长(Veneault-Fourrey et al. 2006)。稻瘟病菌中Moatg1Moatg2Moatg3Moatg4Moatg5Moatg6Moatg7Moatg8Moatg9Moatg10Moatg12Moatg13Moatg15Moatg16Moatg17Moatg18的缺失突变体不能引发稻瘟病,表明这些基因在稻瘟病菌致病过程中发挥作用;这种致病性的缺失是由于附着胞内甘油浓度的下降而导致细胞膨压的降低引起的(Lu et al. 2009)。而在大孢粪壳菌Sordaria macrospora中,Smatg8及Smatg4通过选择性及非选择性自噬参与调控营养生长、自噬体的发育及子囊袍子萌发等过程(Oliver & Stefanie 2013)。

许多丝状真菌对于植物来说是致病菌,农业上,这些真菌引起的真菌病害将导致农作物的减产及质量的下降。传统的防治真菌病害的药物存在着药物残留高,病菌易产生抗药性等问题,而现代农业逐渐强调低毒、低残留、高效及环境相容性。如果可以以真菌自噬为靶点,筛选出特异性抑制真菌自噬的化合物,从而抑制真菌对宿主的侵染,也许可以克服传统农药的弊端。另一方面,许多真菌次级代谢产物具有抗癌抗肿瘤作用。近年来的研究提供了越来越多的证据支持自噬是一种肿瘤抑制途径的观点(Levine 2007)。事实上,调节自噬和调节肿瘤发生的信号通路密切重叠,如TOR信号上游抑制子是抑癌基因,包括PTEN、TSC1和TSC2,刺激自噬过程,相反,激活致癌基因TOR的蛋白如Ⅰ类PI3K和Akt等则抑制自噬。尽管目前尚不清楚细胞存活/细胞死亡效应是否与自噬抑制肿瘤的作用有关,但是这些效应可能在癌症治疗过程中十分重要。针对ATG基因用siRNAs特异性的抑制自噬过程往往在这些实验中加速细胞死亡,而不是防止(Maiuri et al. 2007),说明自噬激活代表着一个细胞试图应对细胞毒性药物诱导产生的压力。这表明抑制自噬(而不是激活自噬)可能更有利于癌症治疗。C77,源于Gliocladium sp.的次生代谢产物,属于多硫代二酮哌嗪(epipolythiodioxopiperazines,ETPs)类化合物(Dong et al. 2005;Gardiner et al. 2005),具有广谱的生物活性。本实验室近期的研究结果表明,C77在一定程度上抑制乙肝病毒的复制,而这一过程可能是通过抑制乙肝细胞自噬过程引起的。丝状真菌中的自噬过程影响着次级代谢产物的生成及释放。产黄青霉Penicillium chrysogenumatg1的缺失突变体在抑制了自噬过程的同时明显提高了青霉素的产量(Bartoszewska et al. 2011b)。因而,更好地了解自噬的分子机制将有利于我们以自噬为靶点寻求肿瘤治疗的突破点。

7 小结

细胞自噬是真核细胞中保守的基本功能,在维持细胞内生理平衡的过程中发挥着重要作用。越来越多的研究表明自噬基因的缺陷与人类多种疾病密切相关,提示着自噬具有成为治疗疾病新靶点的可能。各种具有重要生理学意义的选择性自噬途径的发现,使得人们进一步认识到细胞自噬具有更加重要的生理学意义。在酵母及哺乳动物细胞中对于自噬的起始、选择性及非选择性自噬途径的研究已经较为透彻,然而在丝状真菌中,研究多集中于非选择性的巨自噬过程,在其他方面留有较大空白。未来,丝状真菌的自噬研究需要解决以下问题:自噬是如何起始的,自噬体膜的来源,自噬及其相关蛋白是如何影响丝状真菌形态及生理的,以及丝状真菌中选择性自噬途径与功能的阐述。通过回答以上问题,我们将能更好地了解自噬在丝状真菌中起到的作用,同时丰富我们对真核生物自噬的认知。

The authors have declared that no competing interests exist.


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